{"id":8252,"date":"2024-11-11T16:24:51","date_gmt":"2024-11-11T15:24:51","guid":{"rendered":"https:\/\/www.laboratoriobarba.es\/?page_id=8252"},"modified":"2024-11-28T12:41:35","modified_gmt":"2024-11-28T11:41:35","slug":"pruebas-citologicas","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/www.laboratoriobarba.es\/?page_id=8252","title":{"rendered":"Pruebas citol\u00f3gicas"},"content":{"rendered":"

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El env\u00edo de espec\u00edmenes biol\u00f3gicos debe cumplir los protocolos establecidos por el servicio de mensajer\u00eda o transporte utilizado. En algunos casos, el transporte a\u00e9reo requiere el cumplimiento de la normativa de la Asociaci\u00f3n Internacional de Aviaci\u00f3n y Transporte (IATA) para materiales peligrosos.<\/p>\n

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En el caso de efectos de masa superficiales, la toma de muestras con aguja fina (es decir, aspiraci\u00f3n o t\u00e9cnica de extracci\u00f3n de n\u00facleos\/\u00abp\u00e1jaro carpintero\u00bb) suele tener un mayor rendimiento diagn\u00f3stico y ser m\u00e1s representativa de la lesi\u00f3n primaria que las muestras obtenidas mediante impresi\u00f3n superficial. Los frotis de impresi\u00f3n son propensos a contaminarse con restos y flora de la piel o del entorno, o pueden representar s\u00f3lo una inflamaci\u00f3n o infecci\u00f3n secundaria.<\/p>\n

El material aspirado debe extenderse en una monocapa (es decir, aproximadamente la mitad de las c\u00e9lulas se tocan pero no se superponen) tras su aplicaci\u00f3n al portaobjetos (Im\u00e1genes de linfocitos 1 y c\u00e9lulas mesenquimales 2)<\/p>\n

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\"Img.\u00a0 \u00a0 \u00a0 \u00a0 \u00a0 \u00a0\"\"<\/p>\n

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El m\u00e9todo de extendido preferido consiste en un extendido horizontal suave utilizando un segundo portaobjetos que se coloca encima del material despu\u00e9s de depositarlo en el portaobjetos inferior (v\u00e9ase imagen 3 de preparaci\u00f3n \u00f3ptima). Esta t\u00e9cnica es superior a la t\u00e9cnica pull-apart vertical (v\u00e9ase imagen 4 de preparaci\u00f3n pull-apart).<\/p>\n

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\"Img.\u00a0 \u00a0 \u00a0 \u00a0 \u00a0 \u00a0\"Img.<\/p>\n

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La densidad excesiva de las muestras y la cit\u00f3lisis inhiben la capacidad de evaluar adecuadamente las c\u00e9lulas en las muestras citol\u00f3gicas (v\u00e9anse las diapositivas Densidad excesiva de las muestras bajo aumento 5 y alto aumento 6; v\u00e9ase tambi\u00e9n la diapositiva Cit\u00f3lisis excesiva (lisis celular) 7 ). S\u00f3lo las c\u00e9lulas intactas pueden evaluarse citol\u00f3gicamente porque la cit\u00f3lisis introduce artefactos que pueden simular malignidad, como el agrandamiento de los n\u00facleos y el aumento de la prominencia de los nucl\u00e9olos.<\/p>\n

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\"Img.\u00a0 \u00a0 \u00a0 \u00a0 \u00a0 \u00a0 \"Img.\u00a0 \"img.<\/p>\n

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Tanto la t\u00e9cnica pull-apart como la falta de esfuerzo para extender el material (es decir, el simple secado al aire de material biol\u00f3gico depositado en forma de gota) son propensas a una densidad excesiva de la muestra y a la cit\u00f3lisis, y pueden no ser diagn\u00f3sticas (v\u00e9ase muestra densa sin extensi\u00f3n en portaobjetos 8).<\/p>\n

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Las muestras con componente flu\u00eddico pueden extenderse de la misma manera que los frotis sangu\u00edneos. Los fluidos muy celulares pueden untarse directamente; los fluidos de baja celularidad deben centrifugarse para concentrar las c\u00e9lulas.
Los portaobjetos deben conservarse a temperatura ambiente y protegidos del polvo, as\u00ed como de la humedad excesiva y la exposici\u00f3n prolongada a la luz. Es importante etiquetar f\u00edsicamente los portaobjetos con la identificaci\u00f3n del paciente, as\u00ed como la procedencia de la muestra citol\u00f3gica; etiquetar \u00fanicamente las cajas o cartones de portaobjetos no es fiable porque los portaobjetos pueden separarse de los recipientes o \u00e9stos pueden reutilizarse.<\/p>\n

Las muestras que contienen un exceso de ultrasonidos o gel lubricante pueden no ser diagn\u00f3sticas, ya que este material es opaco al microscopio y oculta las c\u00e9lulas, adem\u00e1s de provocar una mala captaci\u00f3n de la tinci\u00f3n celular.<\/p>\n

Otras consideraciones pr\u00e1cticas para la preparaci\u00f3n de muestras citol\u00f3gicas son utilizar siempre portaobjetos frescos, evitar el uso de cubreobjetos y cinta de acetato, y asegurarse de que el material celular se deposita hacia el centro de una sola cara del portaobjetos (v\u00e9ase la muestra en ambos lados del portaobjetos 9).<\/p>\n

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\"Img.<\/p>\n

A medida que se generaliza el escaneado digital de portaobjetos en los laboratorios de diagn\u00f3stico, no es posible que un pat\u00f3logo simplemente d\u00e9 la vuelta al portaobjetos en su microscopio para enfocar el material del portaobjetos opuesto. Adem\u00e1s, si el material de ambos lados se superpone, es posible que el efecto neto sea un material demasiado grueso para evaluarlo adecuadamente<\/p>\n

La exposici\u00f3n de frotis de sangre y citol\u00f3gicos a formalina o vapores de formalina (incluida la proximidad a frascos sellados de formalina) interferir\u00e1 con la tinci\u00f3n y evaluaci\u00f3n adecuadas, lo que puede dar lugar a una muestra no diagn\u00f3stica. Estas preparaciones en portaobjetos nunca deben enviarse al laboratorio en el mismo paquete que los tejidos fijados con formol.<\/p>\n

Los frotis no fijados y secados al aire suelen ser adecuados para la tinci\u00f3n inmunocitoqu\u00edmica (ICC); sin embargo, en algunos casos, se recomienda enviar las muestras en tubos que contengan medios de transporte. Si se prev\u00e9n tinciones especiales, incluida la CCI, deber\u00e1 contactarse con el laboratorio antes del env\u00edo para asegurarse de que se sigue el protocolo espec\u00edfico de su laboratorio.<\/p>\n

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